Presented at the 2nd International Symposium on Innovative Approaches in Scientific Studies (ISAS2018-Winter), Samsun, Turkey, Nov 30, 2018

SETSCI Conference Proceedings, 2018, 3, Page (s): 848-852 , https://doi.org/

Published Date: 31 December 2018    | 1448     9

Bu çalışmada Laurus nobilis L. türüne ait 5 farklı ticari uçucu yağın (T1, T2, T3, T4 ve T5), 8 farklı klinik izolata karşı
antimikrobiyal aktivitesi araştırılmıştır. Bu amaçla antimikrobiyal aktivite deneylerinde disk difüzyon ve mikrodilüsyon
yöntemleri kullanılmıştır. Tüm klinik izolatlara karşı antimikrobiyal aktiviteye sahip olan uçucu yağların Minimum İnhibitör
Konsantrasyonu (MİK) belirlenmiştir. Araştırmada en yüksek inhibisyon zon çapları T1, T2, T3 ve T5 ticari uçucu yağlarından
elde edilmiş ve sırasıyla Klebsiella pneumaniae klinik izolatı için 31,00 mm, Bacillus cereus klinik izolatı 1 için 12,00 mm,
Escherichia coli klinik izolatı için 37,75 mm ve yine Escherichia coli klinik izolatı için 47,75 mm olarak belirlenmiştir.
Çalışmada en düşük inhibisyon zon çapları, T1 ve T5 ticari uçucu yağılarından Serratia marcescens klinik izolatı için sırasıyla
10,00 mm ve 07,00 mm olarak belirlenmiştir.
Araştırmada denenen MİK konsantrasyon aralığı %8 ile %0,0625 değerleri arasında olmuştur. Tüm klinik izolatlara karşı etkili
bulunan T3 ve T5 ticari uçucu yağlarından elde edilen MİK değerleri %0,0125 ile %8 arasında tespit edilmiştir. Araştırmanın
bundan sonraki aşamalarında klinik izolatlara karşı etkili bulunan ticari uçucu yağların GC-MS analizlerinin yapılması ve
elektron mikroskobu ile hücreler üzerine etkinliğin tespit edilmesi planlanmaktadır.  

Keywords - Defne, Esansiyel Yağ, Antimikrobiyal Aktivite, Klinik Bakteri, Minimum İnhibitör Konsantrasyonu

[1] Balık, İ. Antibiyotik direnci yılda 10 milyondan fazla can alacak. https://www.memurlar.net/haber/788300/antibiyotik-direnci-yilda-10-milyondan-fazla-can-alacak.html. 2018, Kasım.
[2] G. Karras, V. Giannakaki, V. Kotsis, Miyakis S, “Novel Antimicrobial Agents Againts Multi-Drug-Resistant Gram-Negative Bacteria: An Overview, ” Recent Patents on Anti-Infective Drug Discovery 7: 175–181.2012.
[3] S. Purkayastha, R. Narain, P. Dahiya, “Evaluation of Antimicrobial and Phytochemical Screening of Fennel, Juniper and Kalonji Essential Oils Againts Multi Drug Resistant Clinical Isolates, ” Asian Pacific Journal of Tropical Biomedicine. 1625–1629.2012.
[4] A. Merghni, H. Marzouki, H. Hentati, “Antibacterial and antibiofilm activities of Laurus nobilis L. essential oil against Staphylococcus aureus strains associated with oral infections,” PathologieBiologie3205; No. of Pages 6. 2015.
[5] G.K. İncili, A. Dikici, M. Çalıcıoğlu, Türkiye Klinikleri 3 Food Hyg Technol-Special Tropics 2015: 87-91. 2015.
[6] H. Bozkurt, H. Güdücüoğlu, Y. Bayram, S. Gülmez, N. Kutluay, E. N. Bozkurt, M. Berktaş, “Klinik Örneklerden Üretilen Serratia Cinsi Bakterilerin Çeşitli İnfeksiyonlardaki Rolü ve Antimikrobiyallere Duyarlılıkları,” Van Tıp Dergisi, 12(3): 182–188. 2005.
[7] B.H. Liou, R. W. Duh, Y.T. Lin, T.L.Y. Lauderdale, C.P. Fung,“A Multicenter Surveillance of Antimicrobial Resistance in Serratia marcescens in Taiwan,” Journal of Microbiology, Immunology and Infection 47: 387–393. 2014.
[8] KJ. Ryan, CG. Ray,Sherris Medical Microbiology (4th bas.). McGraw Hill. ISBN 0-8385-8529-9 Effect of Eucalyptus microtheca. Int J Enteric Pathog, 2(2): 1651–1620. 2004.
[9] A. Çolak, B, Meriçli Yapıcı, “Hastaneden İzole Edilen Patojen Bakterilere Karşı Bitki Yağlarının Antimikrobiyal Aktivitesinin Belirlenmesi” Çanakkale Onsekiz Mart Üniversitesi, Çanakkale, Türkiye, Ocak, 2016.
[10] EUCAST, (2015). Antimikrobik Duyarlılık Testine Yönelik EUCAST Disk Difüzyon Yöntemi. Sürüm 5.0, Ocak.
[11] H. Bozkurt, H. Güdücüoğlu, Y. Bayram, S. Gülmez, N. Kutluay, E. N. Bozkurt, M. Berktaş, “Klinik Örneklerden Üretilen Serratia Cinsi Bakterilerin Çeşitli İnfeksiyonlardaki Rolü ve Antimikrobiyallere Duyarlılıkları,” Van Tıp Dergisi, 12(3): 182–188. 2005.
[12] B. Shan, Y.Z. Cai, J.D. Brooks, H. Corke, “The In Vitro Antibacterial Activity of Dietary Spice and Medicinal Herb Extracts, ” International Journal of Food Microbiology 117: 112–119. 2007.
[13] T.M. Baratta, H.J. Dorman, G. Stanley, D.M. Biondi, G. Ruberto, “ Chemical Composition, Antimicrobial and Antioxidative Activity of Laurel, Sage, Rosemary, Oregano and Coriander Essential Oils, ” Journal of Essential Oil Research 10, 618-627. 2013.
[14] S. Bennadja, Y.T.A. Kaki, A. Djahaoudi, Y. Hadef, A. Chefrour, “Antibiotic Activity of the Essential Oil of Laurel (Laurus nobilis L.) on Eight Bacterial Strains,” Vol. 7, No. 8, pp. 814-819 Journal of Life Sciences, ISSN 1934-7391, August 2013.
[15] L. Cherrat, L. Espina, M. Bakkali, D. García-Gonzalo, P.R. Pagán, A. Laglaoui, “Chemical Composition and Antioxidant Properties of Laurus nobilis L. and Myrtus communis L. Essential Oils From Morocco and Evaluation of Their Antimicrobial Activity Acting Alone or in Combined Processes for Food Preservation, ” J Sci Food Agric 94: 1197–1204. 2014.
[16] A.M. Azız, M. Adnan, H. Rahman, F.E. Abd_Allah, A. Hashem, A.A. Alqarawı, “ Antibacterial Activities of Medicinal Plants Against Multidrug Resistant Urinarıy Tract Pathogen,” Pakistan Journal of Botany 49(3): 1185-1192, 2017.